小鼠C肽(C-Peptide)ELISA试剂盒使用说明书

小鼠C肽(C-Peptide)ELISA试剂盒使用说明书

本试剂盒仅供体外研究使用                                    

预期应用

ELISA法定量测定小鼠血清、血浆、细胞培养上清或其它相关生物液体中C肽(C-Peptide)含量。

实验原理

用纯化的抗体包被微孔板，制成固相载体，往包被抗C-Peptide抗体的微孔中依次加入标本或标准品、生物素化的抗C-Peptide抗体、HRP标记的亲和素，经过彻底洗涤后用底物TMB显色。TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的C-Peptide呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），计算样品浓度。

试剂盒组成及试剂配制

1.         酶联板：一块（96孔）

2.         标准品（冻干品）：2瓶，每瓶临用前以样品稀释液稀释至1ml，盖好后静置10分钟以上，然后反复颠倒/搓动以助溶解，其浓度为4,000 pg/ml，做系列倍比稀释后，分别稀释4,000 pg/ml，2,000 pg/ml，1,000 pg/ml，500 pg/ml，250 pg/ml，125 pg/ml，62.5 pg/ml，样品稀释液直接作为标准浓度0 pg/ml，临用前15分钟内配制。

如配制2,000 pg/ml标准品：取0.5ml（不要少于0.5ml）4,000 pg/ml 的上述标准品加入含有0.5ml样品稀释液的Eppendorf管中，混匀即可，其余浓度以此类推。

3.         样品稀释液：1×20ml/瓶。

4.         检测稀释液A：1×10ml/瓶。

5.         检测稀释液B：1×10ml/瓶。

6.         检测溶液A：1×120ul/瓶（1:100）临用前以检测稀释液A 1:100稀释，稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制（每孔100ul），实际配制时应多配制0.1-0.2ml。如10ul检测溶液A加990ul检测稀释液A的比例配制，轻轻混匀，在使用前一小时内配制。

7.         检测溶液B：1×120ul/瓶（1:100）临用前以检测稀释液B 1:100稀释。稀释方法同检测溶液A。

8.         底物溶液：1×10ml/瓶。

9.         浓洗涤液：1×30ml/瓶，使用时每瓶用蒸馏水稀释25倍。

10.     终止液：1×10ml/瓶（2N H₂SO4）。

11.     覆膜：1×5张  

标本的采集及保存

1.  血清：全血标本请于室温放置2小时或4℃过夜后于1000 x g离心20分钟，取上清即可检测，或将标本放于-20℃或-80℃保存，但应避免反复冻融。

2. 血浆：可用EDTA或肝素作为抗凝剂，标本采集后30分钟内于2 - 8° C 1000 x g离心15分钟，或将标本放于-20℃或-80℃保存，但应避免反复冻融。

3.  细胞培养物上清或其它生物标本：请1000 x g离心20分钟，取上清即可检测，或将标本放于-20℃或-80℃保存，但应避免反复冻融。

注：以上标本置4℃保存应小于1周，-20℃或-80℃均应密封保存，-20℃不应超过3个月，-80℃不应超过6个月；标本溶血会影响最后检测结果，因此溶血标本不宜进行此项检测；高血脂的标本不需进行特殊处理，可直接检测。

操作步骤

实验开始前，请提前配制好所有试剂；试剂或样品稀释时，均需混匀，混匀时尽量避免起泡。每次检测都应该做标准曲线。如样品浓度过高时，均应用样品稀释液进行稀释，以使样品符合试剂盒的检测范围。建议各实验室在操作前先进行预实验以建立最佳稀释倍数。

1.         加样：分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释液100ul，余孔分别加标准品或待测样品100ul，注意不要有气泡，加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀，酶标板加上盖或覆膜，37℃反应120分钟。

为保证实验结果有效性，每次实验请使用新的标准品溶液。

2.         弃去液体，甩干，不用洗涤。每孔加检测溶液A工作液 100ul（在使用前一小时内配制），37℃,60分钟。

3.         温育60分钟后，弃去孔内液体，甩干，洗板3次，每次浸泡1-2分钟，350ul/每孔，甩干（也可轻拍将孔内液体拍干）。

4.         每孔加检测溶液B工作液（同检测A工作液） 100ul，37℃，60分钟。

5.         温育60分钟后，弃去孔内液体，甩干，洗板5次，每次浸泡1-2分钟，350ul/每孔，甩干（也可轻拍将孔内液体拍干）。

6.         依序每孔加底物溶液90ul，37℃避光显色（30分钟内，此时肉眼可见标准品的前3-4孔有明显的梯度兰色，后3-4孔梯度不明显，即可终止）。

7.         依序每孔加终止溶液50ul，终止反应，此时蓝色立转黄色。终止液的加入顺序应尽量与底物液的加入顺序相同。为了保证实验结果的准确性，底物反应时间到后应尽快加入终止液。

8.         用酶联仪在450nm波长依序测量各孔的光密度（OD值）。 在加终止液后立即进行检测。

注：

1.  每次实验留一孔作为空白调零孔（不同于空白孔），该孔不加任何试剂，只是最后加底物溶液及2N H₂SO4。测量时先用此孔调OD值至零。

2.  严格按照规定的时间和温度进行温育以保证准确结果。所有试剂都必须在使用前达到室 温。使用后立即冷藏保存试剂。

3.  洗板不正确可以导致不准确的结果。在加入检测溶液B或底物前确保尽量吸干孔内液体。为防止样品蒸发，试验时将反应板放于铺有湿布的密闭盒内，酶标板加上盖或覆膜，以避免液体蒸发；洗板后应尽快进行下步操作，避免酶标板长时间处于干燥状态。

4.  消除板底残留的液体和手指印，否则影响OD值。

5.  在储存和温育时避免强光直接照射。

6.  未使用完的酶标板或者试剂，请于2-8℃保存。标准品、检测溶液A工作液、检测溶液B工作液请依据所需的量配置使用，请精确配置标准品及工作液，尽量不要微量配置（如吸取检测溶液A时，一次不要小于10ul），以避免由于不准确稀释而造成的浓度误差；检测液A、B，以及底物溶液在使用前，应置于37℃温育30分钟；请勿重复使用已稀释过的标准品、检测溶液A工作液或检测溶液B工作液。

7.  建议检测样品时均设双孔测定，以保证检测结果的准确性。

洗板方法
手工洗板方法：吸去（不可触及板壁）或甩掉酶标板内的液体；在实验台上铺垫几层吸水

纸，酶标板朝下用力拍几次；将推荐的洗涤缓冲液至少0.3ml注入孔内，浸泡1-2分钟，根据需

要，重复此过程数次。
自动洗板：如果有自动洗板机，应在熟练使用后再用到正式实验过程中。

特异性

    本试剂盒可同时检测重组或天然的小鼠C肽(C-Peptide)，且与其它相关蛋白无交叉反应。

计算

  以标准物的浓度为横坐标（对数坐标），OD值为纵坐标（普通坐标），在半对数坐标纸上绘出标准曲线（推荐使用专业制作曲线软件进行分析，如curve expert 1.3），根据样品的OD值由标准曲线查出相应的浓度，再乘以稀释倍数；或用标准物的浓度与OD值计算出标准曲线的回归方程式，将样品的OD值代入方程式，计算出样品浓度，再乘以稀释倍数，即为样品的实际浓度。

注意事项

1.         洗涤过程非常重要，不充分的洗涤易造成假阳性。

2.         一次加样时间最好控制在5分钟内，如标本数量多，推荐使用多道移液器加样。

3.         请每次测定的同时做标准曲线，最好做复孔。

4.         如标本中待测物质含量过高，请先稀释后再测定，计算时请最后乘以稀释倍数。

5.         在配制标准品、检测溶液工作液时，请以相应的稀释液配制，不能混淆。

6.         底物请避光保存。

检测范围：62.5 pg/ml - 4,000 pg/ml

最低检测限：15.6 pg/ml

说明

1.          在储存及孵育过程中避免将试剂暴露在强光中。所有试剂瓶盖须盖紧以防止蒸发和污染，试剂避免受到微生物的污染，因为蛋白水解酶的干扰将导致出现错误的结果。

2.          小心吸取试剂并严格遵守给定的孵育时间和温度。请注意在吸取标本 /